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完成环境总基因组DNA抽提后,利用1%琼脂糖凝胶电泳检测抽提的基因组DNA。
按指定测序区域,合成带有barcode的特异引物。
为保证后续数据分析的准确性及可靠性,需满足两个条件,1) 尽可能使用低循环数扩增;2) 保证每个样本扩增的循环数一致。随机选取具有代表性的样本进行预实验,确保在最低循环数中使绝大多数样本能够扩增出浓度合适的产物。
PCR 采用TransGen AP221-02:TransStart Fastpfu DNA Polymerase;
PCR仪:ABI GeneAmp® 9700型;
全部样本按照正式实验条件进行,每个样本3个重复,将同一样本的PCR产物混合后用2%琼脂糖凝胶电泳检测,使用AxyPrepDNA凝胶回收试剂盒(AXYGEN公司)切胶回收PCR产物,Tris_HCl洗脱; 2%琼脂糖电泳检测。
参照电泳初步定量结果,将PCR产物用QuantiFluor™ -ST蓝色荧光定量系统(Promega公司)进行检测定量,之后按照每个样本的测序量要求,进行相应比例的混合。
1) 连接“Y”字形接头;
2) 使用磁珠筛选去除接头自连片段;
3) 利用PCR扩增进行文库模板的富集;
4) 氢氧化钠变性,产生单链DNA片段。
1) DNA片段的一端与引物碱基互补,固定在芯片上;
2) 另一端随机与附近的另外一个引物互补,也被固定住,形成“桥 (bridge)”;
3) PCR扩增,产生DNA簇;
4) DNA扩增子线性化成为单链。
5) 加入改造过的DNA聚合酶和带有4种荧光标记的dNTP,每次循环只合成一个碱基;
6) 用激光扫描反应板表面,读取每条模板序列第一轮反应所聚合上去的核苷酸种类;
7) 将“荧光基团”和“终止基团”化学切割,恢复3'端粘性,继续聚合第二个核苷酸;
8) 统计每轮收集到的荧光信号结果,获知模板DNA片段的序列。
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